細胞樣本根據(jù)目的物所在部位可選擇細胞裂解液或細胞培養(yǎng)上清作為樣本。 需要注意的是： 因該類樣本干擾因素較多， 如細胞狀態(tài)、 細胞數(shù)量(大于 10^6)、ph(約為 7)、培養(yǎng)基鹽離子濃度、采樣時間等，所以可能存在檢測不出的情況。

如果目的物是分泌型，主要在胞外，即可選擇細胞培養(yǎng)上清作為樣本，如果目的物主要存在于胞內(nèi)，則建議選擇細胞裂解液作為樣本類型。細胞培養(yǎng)上清處理方法相對簡單，取細胞培養(yǎng)上清，1000×g 離心 20 分鐘，取上清即可檢測。

細胞裂解液：

1）貼壁細胞需要先用胰酶消化，離心收集細胞（懸浮細胞可直接離心收集） ；

2）將收集到的細胞用冷PBS 洗3次；

3）物理方法裂解細胞（可先超聲破碎細胞，再反復凍融） ：

       ⇒ 超聲破碎：取適量PBS 重懸細胞，用一定功率的超聲波處理細胞懸液，使細胞急劇震蕩破裂；

       ⇒ 反復凍融：將待破碎的細胞在-20 度以下冰凍，室溫融解，反復3次，使細胞溶脹破碎；

4）將標本于2-8 度 1500×g 離心 10 分鐘，收集上清備用。

處理樣本的過程就是收集目標蛋白的過程，由于蛋白容易變性，降解，故該過程應盡量溫和。樣本處理之后的儲存也非常重要，尤其注意不要反復凍融，樣本處理之后可分裝密封保存， 4 度保存應小于 1 周，-20 度不應超過 1 個月，-80度不應超過2個月。在標本使用前應緩慢均衡至室溫，不應加熱使之融解。樣本的處理是實驗成功的第yi步, ，以上就是關于常見樣本處理方法的一個簡述，供研究者參考。